ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 05.05.2024
Просмотров: 12
Скачиваний: 0
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
-
Профилактика воздушной инфекции.
Профилактика воздушно-капельных инфекций может быть специфическая и неспецифическая.
Самым эффективным способом профилактики воздушно-капельных инфекций является специфическая профилактика – вакцинация.
К неспецифическим мерам профилактики капельных инфекций следует отнести следующие:
-
Правильное зонирование помещений медицинских организаций (стерильная зона, предоперационная, хозяйственная и т.д); -
Разделение потока пациентов. (чистые и гнойные в хирургии, с температурой и без в поликлинике, и т.д.) -
ограничение допуска людей к месту оказания помощи; -
строгое соблюдение лицом, оказывающим помощь, требований асептики (мытье рук, строгая гигиена тела и одежды персонала. применение средств защиты (перчатки, маски, халаты); -
недопущение контакта с загрязненным воздухом открытых ран, ожоговых поверхностей; (обработка бак.лампами помещений, проветривание, влажная уборка)
-
Профилактика контактной инфекции.
-недопущение тактильного контакта с зараженными (загрязненными, инфицированными) предметами.
Профилактика контактной инфекции.
Профилактика контактной инфекции, сводится к осуществлению одного из главных принципов асептики: «Всё, что соприкасается с раной, должно быть стерильно».
С раной соприкасается:
- Хирургические инструменты.
-Перевязочный материал и хирургическое бельё.
-Руки хирурга.
Общие принципы и способы стерилизации. Стерилизация – полное освобождение какого-либо предмета от микроорганизмов и их спор путём воздействия на него физическими или химическими факторами.
Стерилизация – основа асептики. Методы и средства стерилизации должны обеспечивать гибель всех, в том числе высокоустойчивых, микроорганизмов (как патогенных, так и непатогенных). Наиболее устойчивы споры микроорганизмов. Поэтому возможность применения для стерилизации определённых средств оценивают наличием у них спороцидной активности, проявляемой в приемлемые сроки. Используемые в практике методы и средства должны обладать следующими свойствами: 1 уничтожать микроорганизмы и их споры; 2 быть безопасными для больных и медперсонала; 3 не ухудшать рабочие свойства изделий. В современной асептике используют физические и химические методы стерилизации. Выбор того или иного способа стерилизации зависит, прежде всего, от свойств изделия. Основными считают физические методы стерилизации.
Физические методы стерилизации.
К физическим методам относят термические способы – стерилизацию паром под давлением (автоклавирование), стерилизацию горячим воздухом (сухим жаром), а также лучевую стерилизацию.
-
Первичная хирургическая обработка раны. Роль обработки в профилактике хирургической инфекции.
Рана — механическое повреждение органов и тканей, сопровождающееся нарушением целостности кожи и слизистых оболочек (покровных тканей).
По механизму нанесения повреждения и характеру ранящего предмета выделяют раны:
-
Резаная рана; -
Колотая рана; -
Рубленая; -
Ушибленная рана; -
Рваная рана; -
Скальпированная рана; -
Укушенная рана.
Первичной хирургической обработкой раны называется сложная хирургическая операция, выполняемая в первые 24−48 часов с момента ранения (до развития инфекции) с целью предупреждения инфекционных осложнений в ране и предупреждения тяжёлых осложнений, связанных с повреждением жизненно важных органов и тканей.
Основной задачей хирургической обработки раны является удаление из раны из раны нежизнеспособных тканей, инородных тел и остановка кровотечения.
Первичная хирургическая обработка раны подразделяется:
Ранняя- когда оперативная помощь оказывается до 24 часов с момента получения ранения.
Отсроченная: помощь оказывается до 48 часов с момент получения ранения.
Поздняя: когда операция выполняется свыше 48 часов после получения раны.
Этапы первичной хирургической обработки раны:
В условиях операционной после обработки рук хирурга и операционного поля растворами антисептиков, производится анестезия в зависимости от тяжести ранения и состояния пациента.
Первичная хирургическая обработка раны начинается с рассечения кожи, подкожной жировой клетчатки и иссечение нежизнеспособных тканей.
Параллельно с иссечением хирург ведёт ревизию раны, если повреждены крупные сосуды, то производится остановка кровотечения.
Заключительный этап операции. Закрытие операционной раны при ПХО производится строго индивидуально. Для полноценного заживления и профилактики послеоперационных осложнений, производится дренирование послеоперационной раны, назначение антибактериальной и противовоспалительной терапии.
Послеоперационный период протекает от 10−14 дней в зависимости от объема и сложности операции.
В случае если установлен дренаж в области послеоперационной раны, то показанием к прекращению дренирования являются:
-
снижение отека, гиперемии вокруг раны. , -
отсутствие гноя, значительного количества фибрина.
После удаления дренажных систем для оценки состояния раневого канала и окружающих тканей показано ультразвуковое сканирование. Благоприятными ультразвуковыми признаками течения раневого процесса являются: сужение раневого канала на следующие сутки после удаления дренажных трубок
Больному необходимо соблюдать рекомендации врача такие как:
-
Ограничение физической нагрузки. -
Ограничение попадание воды на область раны и послеоперационных швов. -
Принимать препараты, назначаемые лечащим врачом. -
Перевязываться и наблюдутся у хирурга.
Хирург о время перевязок визуально оценивают состояние швов, наличие и распространенность отека, очищение раны. В случае длительно не заживающих ран, назначает дополнительные методы обследования.
При наличия сахарного диабета у больного, назначается общий анализ крови, анализ на сахар крови. Так же к дополнительным методам обследования назначаются рентгенография и УЗИ пораженного участка тела.
Если больной при появлении травмы или раны самостоятельно обрабатывается и не осматривается хирургом или не выполняет рекомендации, возможны осложнения.
К основным осложнениям можно отнести:
-Нагноение раны
-Абсцесс инфицированной раны (гнойное воспаление тканей с их расплавлением и образованием гнойной полости, сопровождается повышением температуры тела до 39,0−40,0С)
-Флегмона (Острый воспалительный процесс жирового подкожного слоя, сопровождается повышением температуры тела до 39,0С)
-Раневые гематомы — образуются вследствие неполной остановки кровотечения. Гематомы являются потенциальными очагами инфекции, кроме того, сдавливая окружающие ткани, приводят к их ишемии.
-
Правила и способы переливания крови.
Переливание крови - серьезная операция по трансплантации живой ткани человека.
Абсолютными показаниями к переливанию крови считаются острая кровопотеря, шок, кровотечение, тяжелая анемия, тяжелые травматичные операции, в том числе с искусственным кровообращением. Показаниями к переливанию крови и ее компонентов служат анемии различного происхождения, болезни крови, гнойно-воспалительные заболевания, тяжелые интоксикации.
Врач, производящий трансфузию, обязан независимо от проведенных ранее исследований и имеющихся записей лично провести следующие контрольные исследования:
1) определить групповую принадлежность крови реципиента по системе AB0 и сверить результат с данными истории болезни; 2) определить групповую принадлежность эритроцитов донора и сопоставить результат с данными на этикетке контейнера или бутылки; 3) провести пробы на совместимость в отношении групп крови донора и реципиента по системе AB0 и резус-фактору; 4) провести биологическую пробу.
Запрещается переливание донорской крови и ее компонентов, не исследованных на СПИД, поверхностный антиген гепатита В и сифилис. Переливание крови и ее компонентов производится с соблюдением правил асептики одноразовыми пластиковыми системами. Полученная от донора кровь (обычно в объеме 450 мл) после добавления консервирующего раствора может храниться в холодильнике при температуре 4-8°С не более 21 дня. Замороженные при температуре жидкого азота (-196°С) эритроциты могут храниться годами.
Допускается переливание цельной крови и ее компонентов только той группы и резус-принадлежности, которая имеется у реципиента. В исключительных случаях допускается переливание резус-отрицательной крови группы О(I) («универсальный донор») реципиенту с любой группой крови в количестве до 500 мл (за исключением детей). Кровь резус-отрицательных доноров А (II) или В (III) можно переливать не только совпадающим по группе реципиентам, но и реципиенту с АВ (IV) группой независимо от его резус принадлежности. Больной с АВ (IV) группой резус-положительной крови может считаться «универсальным реципиентом».
Кроме того, при отсутствии одногруппной крови может быть перелита кровь (эритроцитная масса) 0(I) резус-положительной группы резус-положительному реципиенту любой группы по системе АВ0. Кровь группы А (II) или В (III) резус-положительная может быть перелита резус-положительному реципиенту с группой АВ (IV). Во всех случаях абсолютно обязательной является проба на совместимость. При наличии антител редкой специфичности требуется индивидуальный подбор донорской крови и проведение дополнительных проб на совместимость.
Проведение проб на совместимость.
1. Для определения индивидуальной совместимости из вены берут 3-5 мл крови в пробирку и после проведенного центрифугирования или отстаивания одну большую каплю сыворотки наносят на тарелку или пластину. Рядом наносят каплю крови донора в соотношении 5:1-10:1, перемешивают уголком предметного стекла или стеклянной палочкой и наблюдают в течение 5 мин, после чего добавляют каплю изотонического раствора хлорида натрия и оценивают результат по наличию или отсутствию агглютинации. Отсутствие агглютинации свидетельствует о групповой совместимости крови донора и реципиента, наличие ее- о несовместимости. Пробу на индивидуальную совместимость следует проводить с каждой ампулой переливаемой крови.
2. Определение совместимости крови по резус-фактору проводится в случаях неблагополучного трансфузиологического анамнеза (посттрансфузионные реакции при ге- мотрансфузиях в прошлом, резус-конфликтная беременность, выкидыши), в критических ситуациях, когда невозможно определить резус-фактор крови реципиента, и в случаях вынужденной трансфузии резус-положительной крови больному с неизвестной резус-принадлежностью.
Из вены реципиента берут кровь, как и для определения индивидуальной (групповой) совместимости, центрифугируют, каплю сыворотки наносят на чашку Петри и добавляют в 3-5 раз меньшего размера каплю крови донора, перемешивают, накрывают крышкой и чашку помещают плавать на водяную баню при температуре 42-45 0С на 10 мин. Затем, просматривая чашку на свету, определяют наличие или отсутствие агглютинации. Исследование лучше проводить с помощью лупы. Отсутствие агглютинации позволяет перелить кровь больному из исследуемой ампулы. Наличие агглютинации указывает на то, что у реципиента резус-отрицательная кровь и в сыворотке имеются антирезус-антитела. Этому больному можно перелить лишь резус-отрицательную кровь. Пробу на совместимость крови по резус-фактору следует проводить с каждой ампулой донорской крови.
3. Проведение пробы на биологическую совместимость. Переливание крови или ее компонентов (эритроцитная масса, эритроцитная взвесь, плазмам начинают с проведения биологической пробы. Для этого первые 15-20 мл крови вводят струйно и переливание останавливают на 3 мин, и в это время наблюдают за состоянием больного (поведение, окраска кожных покровов, состояние пульса, дыхания). Учащение пульса, одышка, затруднение дыхания, гиперемия лица, снижение артериального давления указывают на несовместимость крови донора и реципиента. При отсутствии признаков несовместимости пробу повторяют еще дважды и, если реакция отсутствует, продолжают трансфузию. При проведении трехкратной биологической пробы в перерыве между вливаниями крови возможно тромбирование иглы. Во избежание этого в этот период производят медленное капельное вливание крови или, если их одновременно вводят с кровью, кровезаменителей.