Файл: Ченцов, Ю. С. Ультраструктура клеточного ядра.pdf

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 14.10.2024

Просмотров: 40

Скачиваний: 0

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.

16

Интерфазное ядро

Кернс ше обнаружил

(Cairns, 1966), что при короткой им­

пульсной Н3-тимидиновой

метке ДНК из клеток HeLa состоит

из многих отдельно реплицирующихся отрезков, соединенных последовательно.

Эти наблюдения подтвердили и развили в подробном исследо­ вании Хюберман и Риггс (Huberman, Riggs, 1968). Краткие итоги их наблюдений следующие. Длинные фибриллы хромосом­ ной ДНК построены из многих последовательно друг с другом соединенных участков репликации. ДНК реплицируется в вилко­ образных точках роста. Обычно ДНК синтезируется в противо­ положных направлениях в смежных зонах репликации. Каждый репликон ограничен точкой начала репликации и термальной точкой, поэтому в каждом репликоне удвоение ДНК будет идти от точки начала репликации к терминальной точке. Средняя величина репликона — 30 мк, хотя встречаются репликоны очень короткие (несколько микрон) и очень длинные — до 160 мк. Соседние репликоны могут реплицироваться в разное время. Скорость репликации составляет около 2,5 мк в 1 мин.

По данным Кернса о репликации ДНК у Е. coli нельзя было выяснить, идет ли рост дочерней молекулы ДНК в одном направ­ лении или в двух противоположных, как это показано для ДНК животных (Huberman, Riggs, 1968). Но в недавней работе (Wake, 1972) была обнаружена двунаправленная репликация ДНК у

Bacillus subtilis.

В серии работ Тейлора (Taylor, Miner, 1968; Taylor et al., 1968; Schandl, Taylor, 1969) показано, что внутри репликонов синтез ДНК идет путем начального синтеза коротких отрезков ДНК (около 1000 нуклеотидов), которые быстро сшиваются в более длинные цепи длиной до 10—40 мк; эти последние в свою очередь сшиваются, давая гигантские цепи хромосомных ДНК. Таким образом, вероятно, механизм репликации в принципе оди­ наков у ядерных и безъядерных организмов, но эукариоты отли­ чаются тандемным линейным расположением репликонов в ги­ гантской незамкнутой молекуле ДНК.

Существуют единичные данные о циклических ДНК у высших организмов. Так, Хотта и Бассель (Hotta, Bassel, 1965), исследуя ДНК, получепную из спермы быка и проростков пшеницы, с помощью электронного микроскопа наблюдали циклические ДНК, сильно гетерогенные по своей величине. Значение этих наблю­ дений кажется сомнительным, так как циклические формы ДНК в препаратах могут быть или продуктом загрязнения ядерной ДНК митохондриальной ДНК, или результатом ренатурации мо­ лекул ДНК в местах разрывов с одинаковыми повторяющимися последовательностями (Thomas et al., 1970; Stevens, Moustacchi, 1971),


I. Структура хромосом

17

Белки хроматина

 

В состав хроматина, кроме ДНК, входят различные белки, боль­ шая часть которых приходится на гистоны (Буш, 1967; Frambrough, 1969).

Гистоны могут быть отделены от ДНК с помощью солевых растворов высокой ионной силы или кислот.

По свойствам гистоны относятся к белкам, богатым такими основными аминокислотами, как лизин и аргинин, которые опре­ деляют их положительный заряд. Гистоны присоединены к ДНК главным образом ионными связями, при этом катионные группы гистонов нейтрализуют фосфатные группы ДНК. Содержание гистонов в хроматине равно количеству ДНК, хотя зависит от того, какие клетки изучаются. Максимальное отношение мас­ сы гистон: ДНК в нуклеогистоне, в котором кислотные группы ДНК будут полностью связаны с основными белками, должно составлять приблизительно 1,35 : 1. Однако в большинстве слу­ чаев это отношение меньше.

По данным Боннера (Bonner, 1965), в хроматине развиваю­ щихся семядолей гороха содержится 0,9 того количества гистона, которое необходимо для эквивалентного соотношения гистона и ДНК; для хроматина зародышей гороха эта величина составляет 0,8. Эти различия могут определяться степенью матричной ак­ тивности ДНК, т. е. степенью репрессированное™ генома.

Гистоны представлены несколькими группами или фракция­ ми, которые отличаются друг от друга по аминокислотному составу, хотя все они схожи отсутствием цистеина, цистина и триптофана, бедностью тирозином и фенилаланином. Хромато­ графическое разделение гистонов на колонках с ионнообменниками позволяет получить четыре основные фракции гистонов. Первая из фракций, обычно называемая F,, богата лизином и бедна аргинином, третья и четвертая фракции содержат большие количества аргинина и мало лизина, вторая фракция содержит эти аминокислоты в приблизительно равных количествах. В ра­ ботах из лаборатории Боннера (Frambough, Bonner, 1966) пока­ зано, что каждая фракция, за исключением фракции Па, являет­ ся гомогенной фракцией. Гетерогенность гистоновых фракций, полученных в прежних работах, по мнению авторов, объясняется загрязнением или наличием продуктов протеолиза гистонов.

Было показано (Ohlenbush et al., 1967; Георгиев и др., 1967; Smart, Bonner, 1971), что, используя растворы разной ионной силы, можно последовательно извлекать из ДНК различные ги­ стоны. Так, 0,6 М раствор NaCl извлекает только гистоны первой фракции, гистоны, богатые лизином; растворы 0,8 —1,5 М NaCl экстрагируют гистоны второй фракции; гистоны III и IV фракций

Гое.публи

мая

научно * техм

. «я*


18 Интерфазное ядро

экстрагируются более высокими концентрациями солей. Это позволило подойти вплотную к изучению вопроса о функцио­ нальной роли этих белков.

В многочисленных работах лаборатории Боннера (Bonner, 1965; Bonner et al., 1968) показано, что матричная активность ДНК в составе хроматина зависит от количества связанного с ней

гистона. Простая экстракция

гистона из хроматина приводила

к повышению синтеза РНК

на хроматине. Об этом же говорят

данные о матричной активности хроматина из разных объектов: степень этой активности была прямо пропорциональна количеству ДНК, не связанной с гистоном. Отсюда делался прямой вывод о том, что гистоны являются репрессорами матричной активности ДНК в составе хроматина.

Как оказалось (Bonner et al., 1968; MacGillivray, 1968), ги­ стоны из клеток разных тканей, а также гистоны клеток разных организмов очень схожи. Поэтому было неясно, как такая чис­ ленно ограниченная группа белков может осуществлять регуля­ цию репрессии и дерепрессии разных генов, обладающих самой разнообразной нуклеотидной последовательностью.

Боннер и его сотрудники (Bonner et al., 1968; Shin, Bonner, 1969; Holmes et al., 1972) обнаружили, что при экстракции и раз­ делении гистонов и ДНК в градиенте плотности CsCl в зоне ги­ стонов содержится малое количество (0,01—0,05% от массы ДНК) РНК, отличной от других известных типов РНК. Эта хро­ мосомная РНК, видимо, связана с белком, так как устойчива к действию РНК-азы. Хромосомная РНК отделяется от ДНК хро­ матина нагреванием растворов, что может свидетельствовать о ее комплементарной связи с ДНК. Хромосомная РНК состоит из ко­ ротких цепей, содержащих около 40—60 нуклеотидов. По своему составу она гетерогенна (связывает около 5% денатурированной ДНК). Авторы считают, что эта хромосомная РНК ковалентно связана с белком, который с помощью водородных связей комплексируется с гистонами. Специфичность репрессирующего дейст­ вия гистонов, следовательно, определяется специфичностью от­ дельных молекул хромосомных РНК, которые могут комплемен­ тарно связываться с определенными местами на ДНК; к такому комплексу затем присоединяется гистон. В пользу этих представ­ лений говорят следующие эксперименты. Нуклеогистон подвер­ гается воздействию 2 М NaCl, чтобы вызвать полную диссоциацию ДНК и гистонов. Если затем проводить реконструкцию нуклеогистона путем понижения концентрации солей в среде диализом против воды, то гистоны связываются вновь с ДНК, но беспоря­ дочно. Это доказывается тем, что РНК, синтезированная на таком нуклеогистоне in vitro, не вступает в конкурентные взаимоотно­ шения с РНК, синтезированной на нативном хроматине при гиб­ ридизации ее с денатурированной ДНК, т. е. нуклеотидные по­


t. Структура Х0ОМОС6Ш

19

следовательности этих РНК разные. Следовательно, посадка ги­ стонов на ДНК в случае такой реконструкции была неспецифи­ ческой. Однако удалось получить специфическую реконструкцию в присутствии мочевины, которая как объясняют авторы, облег­ чает начальную гибридизацию РНК с ДНК. При удалении хро­ мосомной РНК такой специфической реконструкции хроматина не происходит.

Дж. Полу и Гилмуру (Paul, Gilmour, 1968, Paul et al., 1970)

удалось получить специфическую реконструкцию хроматина толь­ ко в присутствии на ДНК белковых остатков, негистонового ти­ па, после удаления только одних гистонов. Специфическая рекон­ струкция нуклеогистона не происходит, так же как и у Боннера, если брать полностью депротепнизированпую ДНК и гистоны. Пол и Гилмур считают, что гистоны действительно могут закры­ вать ДНК в хроматине и предотвращать ее работу в качестве ма­ трицы для синтеза РНК, но этот эффект неспецифичен; другие, не­ гистоновые, белки ответственны за обнажение специфических по­ следовательностей на ДНК (Paul et al., 1970).

Совсем иные представления о функциональной роли гистонов высказываются >в работах из лаборатории Мирского (Allfrey et al., 1966; Allfrey, 1970). Необходимой предпосылкой для синтеза но­ вых РНК на ранее репрессированных генных локусах является, по их мнению, изменение структуры хроматина, вызванное аце­ тилированием гистонов или происходящее одновременно с этим процессом. Другой признак активного хроматина — фосфорили­ рование серина в ядерных белках, в том числе в гистонах. Фосфо­ рилирование связанных с хромосомами белков влияет на взаимо­ действие ДНК с гистонами и приводит к сдвигу от компактного состояния (неактивного) к диффузному (активному); дефосфори­ лирование может снова привести к плотному скручиванию ком­ плекса ДНК — гистон. Олфри и др. (Allfrey et al., 1966) разделя­ ют точку зрения о том, что часть ядерной РНК может играть роль регуляторов или «распознавателей».

Гистоны, связываясь с ДНК, вызывают агрегацию хроматина в условиях растворов с ионной силой, близкой к физиологиче­ ским растворам (0,05—0,2 М NaCl). Это свойство гистонов может отражать их другую функцию, структурную. Удаление части гис­ тонов с помощью 0,6 М NaCl приводит к растворению осадка хро­ матина (Lucy, Butter, 1955). Обработка хромосом трипсином при­ водит к их набуханию и диспергированию (Буш, 1967; Cole, 1967; Cole, Lungley, 1966), так же как и помещение их в солевые растворы. Эти наблюдения указывают в первую очередь на роль гистонов как факторов, поддерживающих или определяющих структуру хромосом и хроматина. Очевидно, что гистоны, вза­ имодействуя с ДНК, функционируют не только как репрессоры, но и как факторы структуризации хроматина (Johns, 1972). По пред­


20 Йнтерфазное ядро

ставлениям Зюби (Zubay, 1964), гистоны могут образовывать мос­ тики между молекулами ДНК, что может приводить к сверхскру­ чиванию ДНК в составе хроматина и хромосом.

Вероятнее всего, что эти две функции гистонов (репрессия матричной активности и структуризация ДНП) тесно связаны между собой. В пользу этого говорят опыты Георгиева и сотр. (1967), в которых показано, что удаление фракции гистонов, бо­ гатых лизином (Fj), приводит, с одной стороны, к резкому увели­ чению матричной активности, а с другой стороны, к изменению структуры хроматиновых фибрилл, к их утоныпению до 40 А. В неактивном (или слабоактивном) состоянии фибриллы хромати­ на имеют толщину 100—200 А. Вероятнее всего, что изменение толщины фибрилл связано не просто с потерей белка (при экстрак­ ции гистонов 0,6 М NaCl удаляется около 20—25% суммарного белка ДИП), а с перестройкой самой структуры молекул дезоксирибонуклеопротеида.

Георгиев и сотр. (1970) показали, что обработка препаратов ДНП 4 М растворами мочевины приводит к растворению ДНП без потери его белковых компонентов, при этом нити ДНП утонь­ шаются до 40 А. Авторы объясняют это тем, что мочевина нару­ шает слабые взаимодействия типа водородных связей и, возмож­ но, гидрофобные взаимодействия, ответственные за образование сшивок между разными участками молекулы ДНП или между

молекулами ДНП.

(Pardon et al., 1967)

Данные рентгеноструктуриого анал1

также говорят о сверхспирализации ДНК в составе ДНП, в ре­ зультате чего возникает вторичная спираль с шагом 120 А и диа­

метром 100 А.

Гистоны играют большую роль в структуризации хроматина не только на уровне макромолекул. Известно, что ядра многих клеток обладают двумя формами хроматина: компактным — плот­ ным и диффузным — рыхлым. В ядрах лимфоцитов образование компактных масс хроматина связано с высоким содержанием в них лизинового гистона. Ауторадиографически было найдено, что зоны плотного хроматина неактивны в отношении синтеза РНК, в то время как диффузные зоны хроматина включают меченые предшественники РНК (Unuma et al., 1968). Эти две формы хро­ матина удалось выделить препаративно (Frenster et al., 1963). Структуризирующая роль гистонов, богатых лизином, показана на выделенных ядрах и хромосомах (Mirsky et al., 1968). Если экстрагировать гистоны, богатые лизином, из выделенных хромо­ сом, то последние разрыхляются и под электронным микроско­ пом имеют вид сетчато-фибриллярных структур. Добавление к таким экстрагированным хромосомам гистонов, богатых лизином, приводит к восстановлению исходной плотности структуры хро­ мосом. Интересно, что добавление к хромосомам, лишенным ли-