ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 14.10.2024
Просмотров: 47
Скачиваний: 0
30 Интерфазное ядро
При фиксации различных клеток растворами четырехокиси осмия структура ядер и хромосом была одинаковой независимо от способа заключения объектов в среды для ультрамикроскопии. Ядра представляли собой отграниченные хорошо выраженной оболочкой образования, равномерно заполненные короткими от резками фибрилл толщиной около 100 А. Длина таких фибрилл на ультратонких срезах редко достигает 800—1000 А, что говорит об их сильно извитом характере. Располагаются эти фибриллы от носительно друг друга на расстояниях от 500 до 2000 А, что гово рит об их диспергированном состоянии в ядрах клеток таких пре паратов.
В клетках, находящихся в состоянии митоза при фиксации Os04, на срезах хромосомы представлены компактными зонами, состоящими исключительно из фибрилл диаметром около 100 А. Расположены эти фибриллы относительно друг друга намного плотнее, чем в интерфазном ядре, расстояния между ними со ставляют не более 300—200 А. Фибриллы в таких хромосомах также находятся в сильно изогнутом состоянии, так как не удает ся проследить их длину на расстоянии более 800 А. В сечениях хромосом эти фибриллы располагаются совершенно равномерно, заполняя весь объем хромосомы. Никаких подразделений в теле хромосомы на структуры более высокого порядка, чем фибриллы толщиной 100 А, не наблюдается.
При фиксации клеток растворами глютарового альдегида об щая морфологическая картина организации ядер несколько иная. В этом случае постоянно выявляются зоны конденсированного хроматина в виде узкой полоски около ядерной оболочки, встре чаются участки конденсированного хроматина в зоне ядрышка
ив толще ядра — хромоцентры (см. табл. 10).
Вэтом случае основным компонентом, входящим как в участ ки конденсированного, так и диффузного хроматина, являются фибриллы толщиной около 200 А, обладающие заметной субструк турой. Часто видно, что такие фибриллы имеют в своем составе более тонкие фибриллярные образования, однако подсчитать их число и определить порядок расположения в отдельных фибрил
лах толщиной около 200 А очень трудно из-за случайного их се чения на срезах. В ряде случаев удается увидеть в них правиль ную, возможно спиральную, укладку этих субфибрилл, обладаю щих толщиной около 50 А (см. табл. 2).
Та же картина наблюдается и в хромосомах, которые на ста дии метафазы имеют вид плотных образований, сплошь состо ящих из фибрилл около 200 А диаметром (см. табл. 2). Структура этих фибрилл такая же, как и в конденсированных участках хрома тина интерфазных ядер.
Видимо, при изучении не только элементарных фибрилл, но и структуры хромосом в интерфазном ядре или при митозе нужно
I. Структура хромосом |
31 |
отдавать предпочтение |
альдегидной фиксации, а не фиксации |
0s04.
Значительные изменения структуры элементарных хромосом ных фибрилл происходят при действии заведомо хелатных соеди нений, таких как ЭДТА или цианиды, как это впервые показано Рисом (Ris, Chandler, 1963).
Действительно, при добавлении к растворам ДНП ЭДТА в концентрации 1 -10 —2 М можно видеть, что большую часть препа рата составляют тонкие фибриллы (100 А), которые кажутся не только вдвое тоньше исходных, но и гораздо прямее их (табл. 3). Иногда видно, что отдельные фибриллы толщиной 100 А идут на некоторых расстояниях параллельно друг другу, иногда они располагаются попарно. Однако большей частью фибриллы лежат независимо, переплетаясь в различных направлениях. Мы не смо гли наблюдать расщепление одной фибриллы толщиной 250 А на две спирально скрученные субъединицы, как указывал Рис. Пар ное расположение фибрилл толщиной 100 А, на наш взгляд, яв ляется случайным и поэтому не может служить доказательством многонитчатости основной фибриллы, имеющей толщину около
200 А.
Подобное же изменение толщины фибрилл можно вызвать другим агентом, связывающим двувалентные катионы и давно используемым для разрыхления ядерных структур и хромосом,— цианистым калием. Добавление к растворам ДНП KCN в концент рации 0,02—0,002 М приводит к уменьшению диаметра фибрилл хроматина до 100 А. Те же картины можно получить и в целых клетках корешков растений при инкубации их в растворах с хе латными агентами (ЭДТА или KCN).
Таким образом, два различных вещества, ЭДТА и KCN, обла дающие свойством связывать двувалентные катионы, вызывают сходные морфологические изменения в ультраструктуре элемен тарных хромосомных фибрилл! Это может служить подтвержде нием очень важной роли двувалентных катионов в поддержании общей структуры хроматина (Steffensen, 1960) и одновременно должно настораживать при анализе тех работ, где ЭДТА исполь зуется при выделении ДНП.
Резкие структурные изменения происходят с фибриллами ДНП при повышении ионной силы растворов.
Известно, что обработка ядер или хроматина высокими кон центрациями NaCl (1—2 М) приводит к растворению хроматина в результате его диссоциации на белок и ДНК (Pollister, Mirsky, 1946). Постепенное повышение концентрации соли в растворе приводит к последовательной диссоциации нуклеогистонового комплекса, что в свою очередь вызывает уменьшение толщины ис ходных фибрилл ДНП (Георгиев и др., 1967) и увеличение мат ричной активности хроматина (Боннер, 1967).
32 |
Интерфазное ядро |
Как свидетельствуют данные |
электронномикроскопического |
изучения препаратов ДНП, нри постепенном повышении концен трации NaCl в растворе первые изменения в толщине и конфигура ции фибрилл начинают обнаруживаться в растворах 0,4 М NaCl и особенно отчетливо в 0,6 М растворах. При этом фибриллы ДНП утоньшаются, их диаметр колеблется от 100 до 40—50 А. Меняет ся их пространственная композиция. Если в исходных раство рах с низкой ионной силой фибриллы ДНП имели извитой харак тер, то теперь они выглядят сильно вытянутыми, идущими непре рывно на большом расстоянии (табл. 3). Иногда на их поверхно сти видны мелкие гранулы, придающие фибриллам четковидный характер.
Дальнейшее повышение концентрации соли в растворах NaCl (0,8—1,5 М) приводит к преобладанию в препаратах нитей тол щиной 30—40 А, также располагающихся главным образом пря молинейно.
Очевидно, в данном случае наблюдается структурный переход от плотных сильно изогнутых и перевитых фибрилл с толщиной 200 А к фибриллам меньшего диаметра, вытянутым и более рас прямленным. Этот переход связан с потерей белка.
Было замечено (Сенченков, Манамшьян, 1970), что при соле вой экстракции фибрилл ДНП, нанесенных на подложку, их дис социация происходит не полностью. Под электронным микроско пом видно, что в таком препарате, обработанном 2 М раствором NaCl, содержатся участки практически не измененных фибрилл толщиной около 200 А одновременно с тонкими фибриллами. Это наводило на мысль, что при обработке солевыми растворами не весь препарат подвергается диссоциации, а только, по-видимому, та часть, которая не прикреплена к формваровой подложке и до ступна для воздействия NaCl. В таких случаях видны практиче ски все переходы от фибрилл толщиной 200 А до тонких фибрилл толщиной 20—40 А.
Короткая экстракция солевыми растворами путем быстрого прикасания препарата ДНП к поверхности 2 М раствора NaCl с последующей быстрой фиксацией в формалине дала новые инте ресные результаты при использовании негативного контрастиро вания препаратов водными растворами уранилацетата или фос форновольфрамовой кислоты.
На некоторых препаратах видно разворачивание толстых (200 А) фибрилл (табл. 4). При этом в их составе обнаруживается одна фибрилла толщиной около 100 А, уложенная в виде крутой спирали.
В экспериментах по воздействию растворами высокой ионной силы на ДНП особенно видно изменение толщины фибрилл в про цессе экстракции и изменение их общей формы. Действительно, если в исходных растворах фибриллы имели изогнутый, извитой
I. Структура хромосом |
33 |
вид, то после экстракции они сильно вытянуты и большей частью прямые. Можно предположить, что при удалении части белка из нуклеогистона увеличивается общая длина фибрилл.
Чтобы проверить это предположение, был поставлен следую щий опыт (Сенченков и др., 1970; Сенченков, Кадыков, 1970). Полученный из тимуса препарат ДНП подвергали дополнитель ной гомогенизации в измельчителе ткани для того, чтобы полу чить короткие отрезки фибрилл. Затем этот же препарат подвер гали воздействию солевых растворов необходимой концентрации путем замещения исходной среды на требуемую при диализе. Сравнение отрезков фибрилл в обоих случаях могло дать ответ на вопрос, изменяется ли их длина, т. е. происходит ли разворачива ние первоначально компактно уложенного тяжа нуклеогистона. Таким образом были получены препараты для электронной микро скопии одного и того же образца ДНП в низкой ионной силе, в 0,6 М растворе NaCl и в 2,0 М растворе NaCl. Препараты оттеня лись палладием (см. рис. 4). В электронном микроскопе проводи лась съемка не менее двухсот фрагментов фибрилл в каждом слу чае. Необходимо отметить, что в исходных препаратах ДНП в растворах низкой ионной силы измерить длину фибрилл в сгуст ках или комках хроматина не представляется возможным из-за большой вероятной ошибки, связанной с перекрыванием фибрилл. Поэтому во всех трех препаратах сравнивались только наиболее мелкие отрезки.
Полученные цифровые значения длины фрагментов использо вались для построения гистограмм частоты встречаемости отрез ков с различной длиной. На рис. 1 приведены кривые, основанные на трех повторностях аналогичных опытов, которые показывают увеличение числа длинных отрезков при экстракции гистонов растворами NaCl. На кривых вцдно, что в исходном гомогенизи рованном препарате Днп встречается большое количество отрезков длиной около 500—600 А. После экстракции гистонов в 0,6 М или 2,0 М растворе NaCl средняя длина отрезков фибрилл из того же источника составляет 3000 А, т. е. наблюдается увели чение длины фибрилл приблизительно в 5—6 раз. Параллельно этому, как показано выше, происходит также уменьшение диа метра фибрилл, т. е. они становятся тоньше. Приходится полагать, что этот порядок увеличения длины отображает лишь общее яв ление, а именно деспирализацию и вытягивание фибрилл. Гово рить о точном порядке укладки или спирализации фибрилл в единицы толщиной 200 А пока что не приходится, потому что в данных опытах использовали для анализа лишь самые короткие фрагменты.
Все эти наблюдения приводят к выводу о структурной пластич ности фибрилл ДНП, способных к динамическим переходам в за висимости от физико-химических условий среды. Снижение ион-2
2 Ю. С. Ч ен ц ов , В. Ю. П о л як о в