Файл: Правила отбора, хранения и транспортировки патматериала.docx
ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 08.02.2024
Просмотров: 15
Скачиваний: 0
ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.
Правила отбора, хранения и транспортировки патматериала.
Пат.материал – от больного или павшего животного.
Пат. Материал отбирают исходя из патогенеза болезни и тропизма вируса.
Основное требование к отбору пат.материала: вирус в материале должен сохраняться в максимальной концентрации.
ПРАВИЛА:
-
Пр. места (пат мат берут из места возможной локализации вируса, т.е. где развивался патогенез). -
Пр. места (материалы берут во время яркого проявления клин. признаков). -
Правила асептики. -
Пат мат доставляют в лабораторию не позднее 2 часов с момента взятия в термосе со льдом или контейнере со льдом.
Виды пат. Материала:
-
От больных животных
-
Смывы с доступных слизистых оболочек (жёсткими сухими инструментами) -
Биологические жидкости -
Кровь на 1. Вирусовыделение (только ретровирусы, лейкоз); 2. На получение сыворотки (серологическая диагностика) -
Кусочки поражённой кожи (оспа, ящур, кальцивироз, кошачий спид).
-
От трупов (кусочки органа 10-20г)
-кусочки паренхиматозных органов
-регионарные лимфоузлы
-кусочки поражённых органов.
Подготовка материала к вирусологическому исследованию:
Смыв:
-
Ватно-марлевый тампон, зонд или щёточку омывают в физ. р-ре и отправляют в дез. р-р. -
Полученный смыв или вируссодержащую суспензию центрифугируют при 1500-3000 об/мин. -
Надосадочную жидкость переносят в стерильный флакон, добавляют р-ры антибиотиков и оставляют на контакт 2 часа при комнатной температуре. -
Проводят бактериологический контроль суспензии путём посева на бактериальные пит. среды. -
При отсутствии роста микрофлоры, суспензию используют для дальнейшего вирусологического исследования. При наличии роста микрофлоры, суспензию повторно обрабатывают р-ром антибиотика.
Пат. Материал с трупов:
-
Кусочки органов растирают в ступке со стерильным песком до гомогенного состояния. -
Добавляют стерильный физ. р-р в соотношении 1:10 для получения 10% суспензии. -
Суспензию центрифугируют при 1500-3000 об/мин – 20-30 минут. -
Надосадочную жидкость переносят в стерильный флакон, добавляют р-р антибиотиков и делают посев на пит. среду.
Меры борьбы с вирусными болезнями
Профилактика:
-
Специфическая – направлена на предупреждение определённого вируса:
-
Вакцинация (актив) -
Сыворотка -
Серопрофилактика (пассив)
-
Неспецифическая – профилактика любой инф. Болезни.
-
Вет-сан мероприятия (дезинфекция, карантин) -
Зоогигиенические мероприятия (уход, кормление, содержание)
Использование лабораторных животных в вирусологии
Для обнаружения активного репродуцирующегося вируса в вирусологии используют живые системы.
Живая система – совокупность клеток, чувствительных к конкретному вирусу.
Виды живых систем:
-
Лабораторные животные -
Эмбрионы кур -
Культура клеток
Виды ЛЖ:
-
Белые мыши -
Морские свинки -
Кролики -
Белые крысы -
Золотистые хомячки
Био.проба – заражение живой системы.
Цели использования ЛЖ:
-
Индикация (обнаружение) вируса в пат.мат. -
Изоляция (выделение) вируса. -
Идентификация – определение вида вируса. -
Титрование или определение количества вируса. -
Накопление биомассы вируса при изготовлении вакцин. -
Поддержание штаммов вирусов в лаб. условиях путём пассажа. -
Получение гипериммунных сывороток (для серопрофилактики). -
Получение специфической клинической картины болезни (оспы, ящур, в. Болезни Ауески).
Пассаж – заражение ЖС с целью получения новой популяции вирусов или восстановления активности вируса при хранении (=биопроба).
Требования к ЛЖ:
-
Животные должны быть здоровыми, из благополучных по инф. Болезням питомников или вивариев. -
Животные должны быть того вида и возраста, который наиболее чувствителен к данному вирусу. -
Животные должны быть линейными (генетически однородными, полученными от одной пары родителей).
Биопроба заключается в инокуляции (введение) вируссодержащего материала в организм ЛЖ. Способ заражения зависит от тропизма вируса.
Тропизм – способность вирусов репродуцироваться только в определённых чувствительных к нему клетках организма.
За заражёнными животными наблюдают для обнаружения признаков репродукции:
-
Клинические признаки -
Гибель в определённые сроки (первые 24-48ч неспецифическая гибель) -
От положительной биопробы отбирают вторичный пат мат для дальнейшего вирусологического исследования.
Слепой пассаж – заражение ЖС без получения видимых изменений.
При исследовании первичного пат мат проводят не менее трёх слепых пассажей.
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ КУРИНЫХ ЭМБРИОНОВ В ВИРУСОЛОГИИ
КЭ – оплодотворённое яйцо (21 день).
Перед заражением КЭ овоскопируют для определения жизнеспособности:
-
Хорошо выраженные сосуды ХАО (хорионаллантоисная оболочка) -
Подвижность КЭ, которую определяют по движению глаза.
Структуры и функции:
-
Скорлупа (защита) -
Подскорлупная оболочка (защита) -
Воздушная камера (воздухообмен) -
Хорион-аллантоисная оболочка – ХАО (дыхание) -
Аллантоисная полость (выделение) -
Амниотическая полость (физиологическая среда) -
Желточный мешок (питание) -
Белок (запас воды) -
Зародыш
Цели использования КЭ:
-
Индикация -
Изоляция -
Идентификация -
Титрование -
Накопление биомассы вируса -
Поддержание штаммов вирусов в лаб. Условиях.
Преимущества КЭ:
-
К КЭ чувствительно большое количество вирусов благодаря недостаточному развитию защитных механизмов. -
КЭ не образуют АТ в ответ на введение вируса (но, если птица, от которой получили эмбрион, вакцинирована, то могут быть АТ) -
КЭ практически стерильная ЖС -
Простая для заражения система, не требует кормления, ухода и содержания.
Требования к КЭ:
-
Получают от здоровой невакцинированной птицы из благополучных по инф. болезням птицефабрикам -
Скорлупа КЭ должна быть чистой, непигментированной -
Возраст КЭ должен соответствовать тропизму вируса
При заражении КЭ учитывают:
-
Тропизмы вирусов (в какую структуру заражать) -
Срок максимального развития данной структуры.
-
Аллантоисную полость заражают пневмотропными вирусами на 9-11 д инкубации -
ХАО – дермотропные – 10-12д -
Желточный мешок – вирус ринопневмонии лошадей – 5-7 день -
Тело зародыша – пантропные вирусы – 7-14 день
Методика заражения КЭ вирусом болезни Ауески в аллантоисную полость (9дней инкубации, доза 0,2-0,3мл)
-
Скорлупу в области воздушной камеры и со стороны противоположной зародышу фломбруют. -
Стерильным пробойником делают 2 отверстия: по центру возд. камеры и на 5мм ниже возд. камеры с противоположной зародышу стороны. -
Вводят 0,2-0,3 мл вируса на всю длину иглы. -
Отверстие закрывают парафином. -
Подписывают -
Инкубируют 5 дней – 37 градусов.
Индикация вирусов куриных эмбрионов
Заражённые эмбрионы инкубируют и срок инкубации зависит от вида вируса. Зараженные эмбрионы ежедневно овоскопируют.
Гибель эмбриона в первые 24 часа - неспецифическая, такие эмбрионы выбраковывают. В дальнейшем все погибшие эмбрионы до вскрытия помещают на +4 для уплотнения оболочек и снижения вероятности кровотечения при вскрытии.
Признаки репродукции вирусов куриных эмбрионов:
-
Гибель в определённые сроки. -
Патологоанатомические изменения в структурах эмбрионов.
Некоторые вирусы не вызывают гибели и патологических изменений куриных эмбрионов. Их индикацию проводят по свойству гемагглютинации.
Гемагглютинация - склеивание эритроцитов в присутствии гемагглютинирующих вирусов.
Гемагглютинирующие вирусы содержат в своём составе гемагглютинин, который взаимодействуют со специфическими рецепторами на поверхности эритроцитов, вызывая их склеивание. Каждый вирус агглютинирует эритроциты определённого вида животных.
-
Пример: вирус болезни ньюкасла - эритроциты петуха. -
Парагрип-3 КРС - эритроциты морской свинки -
Вирус бешенства - эритроциты гуся
Индикацию гемагглютинирующих вирусов проводят в капельной реакции гемагглютинации (РГА)! не относится к серологическим реакциям!
Методика индикации вируса болезнь ньюкасла в курином эмбрионе (вскрытие)
1. Скорлупу в области воздушной камеры фламбируем.
2. Ножницами срезают скорлупу по границе воздушной камеры.
3.Прорывают под скорлупную оболочку и ХАО и наконечником отбирают одну каплю аллонтоисной жидкости и помещают её на керамическую плитку.
4. Добавляют одну каплю 5% взвеси эритроцитов петуха, перемешивают, контакт 5 мин при комнатной температуре.
Если вирус репродуцировался, то прошла гемагглютинация. Видна как хлопья эритроцитов на фоне просветления жидкости.
Использование культуры клеток в вирусологии
КК - клетки многоклеточного организма, живущие и делящиеся вне организма.
Цели использования - как у куриных эмбрионов.
Преимущества КК:
-
Отсутствие видового ограничения для культивирования вирусов. -
Возможность вмешательства в инфекционный процесс на любой его стадии. -
Культуральная жидкость является стерильной вирусодержащей суспензией.
Классификация культур клеток:
I. По продолжительности жизнеспособности:
-
Переживающая(клетки не делятся и сохраняют жизнеспособность ограниченное время) -
Растущая культура клеток(клетки делятся и сохраняют жизнеспособность определённое время)
-
Культура ткани -
Культура клеток
II. По способу культивирования:
1. Многослойные стационарные КК(клетки прикреплены к поверхности культурального флакона (КК матрас) и делятся на три вида:
-
-первично трипсинизированное(получают из органов животного) -
-диплоидная(морфологически однородные клетки, полученные из первичной и стабилизированные в процессе культивирования); -
-перевиваемые(клетки, полученные из первичной или диплоидной КК спонтанно или искусственно и способные к делению вне организма не ограниченное время)
2. Суспензионные КК(клетки прикреплены на носитель Или микро носитель и в культуральном флаконе находится в виде взвеси).
Методика получения первично-трипсинизированных клеток
Принцип основан на том, что кусочки ткани здорового животного расщепляют протеолитическими ферментами на отдельные клетки. От здорового животного (лучше эмбрион) не позднее 2 часов с момента убоя выделяют орган (почки, лёгкие, сосуды, железы).
-
Кусочки органы измельчают ножницами и отмывают от крови и слизи солевыми растворами. -
Кусочки переносят в колбу с магнитом + 0,25% тёплый раствор трипсина и помещают в магнитную мешалку. -
Дробная трипсинизация( трипсин в начале расщепляет белки межклеточного вещества; отдельные белки накапливаются в растворе и жидкость мутнеет. Полученные клетки переносят в стерильный раствор на +4. К оставшимся кусочкам органа добавляют трипсин и процедуру повторяют до полного истощения ткани). -
Полученные клетки центрифугируют при 1000 об\мин - 10-15мин. Надосадочную жидкость удаляют. -
Количество клеток подсчитывают в камеру горлева и доводят до 10 в 6ст кл\мл. -
Клетки помещают в матрас, добавляют ростовую питательную среду и культивируют при 37°.
Метод наблюдения за КК - световая микроскопия.
Растворы для КК:
1) солевые растворы:
-
-р-р Хэнкса -
-р-р Эрла
Смеси Солей + Глюкоза. Используют как основу для приготовления питательной среды и для манипуляций на Культуре клеток.
2) диспергирующие растворы:
-
-0,25% р-р трипсина -
-0,002% р-р версена
Используют для первичной трипсонизации и для снятия клеток с поверхности матраса.