Файл: Стерильные и асептически изготовляемые лекарственные формы. Классификация лекарственных форм в зависимости от путей введения.pptx

ВУЗ: Не указан

Категория: Не указан

Дисциплина: Не указана

Добавлен: 15.03.2024

Просмотров: 129

Скачиваний: 0

ВНИМАНИЕ! Если данный файл нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам.

СОДЕРЖАНИЕ

Стерильные и асептически изготовляемые лекарственные формы.

Классификация лекарственных форм в зависимости от путей введения:

Пути введения лекарственных веществ в организм можно разделить на две основные группы:

1. энтеральные пути введения – через желудочно-кишечный тракт,

2. парентеральные – минуя желудочно-кишечный тракт.

Энтеральные пути введения:

Стерильные и асептические лекарственные формы:

Нормативно-техническая документация:

Инъекционные лекарственные формы.

Парентеральный путь введения в организм лекарств имеет ряд преимуществ перед другими методами:

Наряду с преимуществами  инъекционный путь введения имеет и некоторые недостатки:

Требования, предъявляемые к инъекционным растворам.

Стерильность.

Стерильность – это отсутствие микроорганизмов всех видов на всех стадиях развития.

Стерильность достигается следующим образом:

Асептический блок состоит из следующих помещений:

Санитарные требования к помещениям и оборудованию асептического блока

2. Перед входом в асептический блок должны лежать резиновые коврики или коврики из пористого материала, смоченные дезинфицирующими средствами.

4. В ассистентской - асептической не допускается подводка воды и канализации. Трубопроводы для воды очищенной следует прокладывать таким образом, чтобы можно было легко проводить уборку.

7. Для дезинфекции воздуха и различных поверхностей в асептических помещениях устанавливают бактерицидные лампы (стационарные и передвижные облучатели) с открытыми или экранированными лампами.

Санитарные требования при изготовлении лекарственных средств в асептических условиях

Для фасовки инъекционных используют флаконы из нейтрального стекла НС-1, НС-2, АБ -1.

ПОДГОТОВКА ПЕРСОНАЛА К РАБОТЕ В АСЕПТИЧЕСКОМ БЛОКЕ. ПРАВИЛА ПОВЕДЕНИЯ

8. При работе в асептических условиях ЗАПРЕЩАЕТСЯ:

ОБРАБОТКА РУК ПЕРСОНАЛА

6. При окончании работы руки обмывают теплой водой и обрабатывают смягчающими средствами, обеспечивающими эластичность и прочность кожи рук.

Методы стерилизации.

Фармакопейными методами стерилизации являются:

Помимо вышеуказанных методов существуют и некоторые другие методы, относящиеся к физической стерилизации:

Термическая стерилизация

Стерилизация горячим воздухом (воздушная стерилизация)

Шкаф медицинский сухожаровой

Паровой метод термической стерилизации

Стерилизацию проводят в паровых стерилизаторах (автоклавах).

Биоиндикаторы паровой стерилизации

Химические методы стерилизации

Газовый метод химической стерилизации

Стерилизация растворами

Для данного метода стерилизации используют перекись водорода и надкислоты.

Химический стерилизатор

Это делается только с согласия врача и по соответствующей прописи.

Стерилизация фильтрованием (механический метод)

Виды мембранных фильтрующих перегородок

Недостатками фильтрования через фарфоровые свечи является:

Отсутствие механических включений.

Контроль на наличие или отсутствие механических включений проводят с помощью установки УК-2. Каждый флакон вносят в зону проходящего света, просматривают на экране.

Стабильность инъекционных растворов.

Условия достижения стабильности:

Классификация лекарственных веществ.

2. Стабилизация растворов солей, образованных слабыми основаниями и сильными кислотами.

Количество стабилизатора для раствора новокаина:

3. Стабилизация растворов легкоокисляющихся веществ.

Апирогенность.

Получение воды для инъекций (апирогенной).

Работа аквадистиллятора.

Этот метод имеет существенные недостатки:

Требования к лекарственным веществам.

Общие правила приготовления растворов для инъекций

Схема технологического процесса.

I стадия Подготовительные работы

1.1 Подготовка помещения и оборудования.

1.2 Обеззараживание воздуха.

1.3 Подготовка персонала для работы в асептическом блоке.

1.4 Подготовка посуды и тароукупорочных средств.

1.5 Подготовка вспомогательного материала

1.6 Подготовка растворителей.

1.7 Подготовка лекарственных и вспомогательных веществ.

II стадия. Изготовление раствора

III стадия. Полный химический анализ.

IV стадия. Фильтрование и фасовка раствора.

4.1 Фильтрование и розлив во флаконы, укупорка.

4.2 Первичный контроль на отсутствие механических включений.

4.3 Укупорка и маркировка.

V стадия. Стерилизация

VI стадия. Контроль качества

6.1 Вторичный контроль готовой продукции.

VII стадия. Оформление к отпуску.

Частная технология инъекционных растворов.

Особенности приготовления раствора натрия гидрокарбоната:

Растворы термолабильных веществ.

Количество стабилизатора для раствора новокаина:

  • 0,25% раствор – 3 мл 0,1 М р-ра НС1 на 1 литр;
  • 0,5% раствор – 4 мл 0,1 М р-ра НС1 на 1 литр;
  • 1% раствор – 9 мл 0,1 М р-ра НС1 на 1 литр;
  • 2% раствор – 12 мл 0,1 М р-ра НС1 на 1 литр;
  • Раствор новокаина для ЛОР практики:

  • 5% раствор – 6 мл 0,1 М р-ра НС1 и 0,5 тиосульфата натрия на 1 литр ;
  • 10% раствор – 8 мл 0,1 М р-ра НС1 и 0,5 тиосульфата натрия на 1 литр ;
  • Раствор новокаина для спинномозговой анестезии готовят асептически без стерилизации и стабилизации, так как спинномозговая жидкость не имеет буферных систем и введение НС1 вызовет сдвиг рН, который может привести к нарушению ЦНС. Новокаин предварительно стерилизуют при 1200 С 2 часа. Для стерилизации используют механический метод (фильтрование).

3. Стабилизация растворов легкоокисляющихся веществ.

  • Легкоокисляющиеся вещества: стрептоцид, сульфацил натрия, аскорбиновая кислота, этилморфина гидрохлорид, адреналина гидротартрат, глюкоза и т.д.
  • Под воздействием кислорода воздуха, легко окисляются, а температура, свет и др. факторы ускоряют этот процесс.

  • Для предупреждения окислительно-восстановительных процессов проводят следующие мероприятия:
  • Введение антиоксидантов.
  • Создание оптимальных границ рН.
  • Насыщение углекислым газом.
  • Использование тары из темного стекла.
  • Антиоксиданты – вещества, обладающие большим окислительно-восстановительным потенциалом, чем стабилизируемые лекарственные вещества (сульфит и метабисульфит натрия, ронгалит, теомочевина и др.)
  • Другая группа антиоксидантов – отрицательные катализаторы – вещества, образующие комплексные соединения с ионами тяжелых металлов, которые являются катализаторами окислительных процессов. (трилон Б, этилендиаминтетрауксусная кислота).
  • Растворы стабилизаторов используют стерильными. Срок хранения до 7 дней. Согласно приказу № 751н количество стабилизатора указывается в ППК.

Апирогенность.


  • Апирогенность инъекционных растворов обеспечивается точным соблюдением правил получения и хранения апирогенной воды и условий изготовления инъекционных растворов.
  • Различают эндогенные и экзогенные пирогены. Первые являются клеточно-тканевыми продуктами, образующимися в определенных условиях. Вторые – это вещества, содержащиеся в микробах и выделяющиеся в процессе их жизнедеятельности. Источниками пирогенных веществ в лекарственных средствах в большинстве случаев являются микроорганизмы: главным образом грамотрицательные бактерии, а также грибы и даже вирусы. Кроме того, пирогенную реакцию могут вызывать некоторые химические вещества: продукты термоокислительной деструкции пластмасс (например, фторопластов), суспензия фосфата кальция, нуклеинат натрия и другие химические вещества. Носителем пирогенности является эндотоксин, присутствующий в клеточной оболочке микроорганизмов и составляющий от 1 до 5% сухой массы бактериальных клеток. Эндотоксин представляет собой липополисахаридо-протеино-липоидный комплекс.
  • Присутствие пирогенных веществ в инъекционных растворах может вызвать у больного при введении в сосуды, спинномозговой канал пирогенную реакцию – повышение температуры тела, озноб, а высокое содержание привести к летальному исходу.
  • Пирогенные вещества термостабильны (разрушаются при 1800 С при нагревании в течение 4 часов), проходят через многие фильтры, освободить от них воду и инъекционные растворы термической стерилизацией практически невозможно, поэтому очень важна профилактика образования пирогенных веществ, которая достигается созданием асептических условий изготовления.

Получение воды для инъекций (апирогенной).

  • Для изготовления растворов для инъекций используют воду для инъекций, которая должна выдерживать испытания на воду очищенную, а также должна быть апирогенной.
  • 1. Получение воды для инъекций должно осуществляться в помещении дистилляционной асептического блока, где категорически запрещается выполнять какие-либо работы, не связанные с перегонкой воды.
  • 2. Воду для инъекций используют свежеприготовленной или хранят при температуре от 5оС до 10оС или от 80оС до 95оС в закрытых емкостях из материалов, не изменяющих свойств воды, защищающих воду от попадания механических включений и микробиологических загрязнений, но не более 24 часов.

  • 3. Получение воды очищенной и для инъекций производится с помощью аквадистилляторов или других разрешенных для этой цели установок.
  • 4. Полученную воду для инъекций собирают в чистые простерилизованные или обработанные паром сборники промышленного производства (в порядке исключения - в стеклянные баллоны). Сборники должны иметь четкую надпись: "Вода для инъекций". Если одновременно используют несколько сборников, их нумеруют.

Работа аквадистиллятора.

  • Водопроводная вода поступает в стенки холодильника, омывая его.
  • По трубопроводам поступает в смеситель, где смешивается с сильными окислителями (бихромат калия), проходя предварительную обработку от пирогенных веществ.
  • Затем вода поступает через водомерное стекло в камеру испарения, где находятся нагревательные элементы. Камера испарения имеет каплеотражающие экраны, которые обеспечивают получение апирогенной воды, так как пирогенные вещества с паром не перегоняются а могут попасть в воду только с каплями воды.
  • Для очистки от пирогенных веществ стеклянные трубки и сосуды обрабатывают подкисленным раствором калия перманганата в течение 25 – 30 минут. Для приготовления раствора к 10 частям 1% раствора калия перманганата добавляют 6 частей 1,5% раствора кислоты серной. После обработки сосуды и трубки тщательно промывают свежеприготовленной водой для инъекций.
  • Методы определения апирогенности.
  • В ГФ XIII есть статья ОФС.1.2.4.0005.15 «Пирогенность», согласно которой испытание проводятся биологическим методом на кроликах путем введения им в ушную вену исследуемого раствора. Контрольным показателем является повышение температуры тела кролика, которое должно укладываться в определенные пределы.

Этот метод имеет существенные недостатки:

  • Необходимость содержать большое количество кроликов в строго регламентированных условиях.
  • Значительные колебания индивидуальной чувствительности кроликов к пирогенам.
  • Более сильное восприятие пирогенной реакции человеком по сравнению с кроликом.
  • Высокая стоимость анализа.
  • Следующее требование - нетоксичность.
  • Испытание на токсичность проводят в соответствии с требованиями ГФ XIII ОФС.1.2.4.0004.15 «Аномальная токсичность» биологическим методом на белых мышах.

Требования к лекарственным веществам.

  • Лекарственные вещества, используемые для изготовления инъекционных лекарственных форм, должны отвечать требованиям ГФ, ФС, ВФС, ГОСТ, квалификации ХЧ (химически чистый), ЧДА (чистый для анализа). Некоторые вещества подвергаются дополнительной очистке и выпускают повышенной чистоты, квалификации «годен для инъекций». Примеси могут оказывать токсическое воздействие на организм или снижать стабильность инъекционных растворов.

  • К препаратам для которых предъявляются дополнительные требования относят: сульфат магния, эуфиллин, кальций хлорид, уротропин, кофеин натрия бензоат, сода, глюкоза, желатин медицинский.
  • Глюкоза и желатин для инъекций должны выдерживать испытание на отсутствие пирогенных веществ.
  • Кальций хлористый - отсутствие железа, у гексаметилентетрамина должны отсутствовать амины, соли аммония и хлороформ. У кофеина бензоата натрия не должно быть органических примесей. Магния сульфат не должен содержать марганца.

Общие правила приготовления растворов для инъекций

  • Растворы готовят массо-объемным способом.
  • При изготовлении используют мерную посуду (мерные колбы).
  • При изготовлении в первую очередь наливают часть воды, затем добавляют вспомогательные вещества (стабилизаторы, изотонирующие объекты), а затем лекарственные вещества. После полного растворения доводят до требуемого объема.
  • Часть раствора отдают провизору-аналитику для качественного и количественного анализа.
  • При положительном результате раствор фильтруют.
  • После фильтрования проводят анализ на отсутствие механических включений, оформляют к стерилизации, маркируя раствор надписями: название раствора, концентрация, объем, дата изготовления, подпись.
  • Интервал времени от начала изготовления раствора до стерилизации не должен превышать 3 часов. Стерилизация растворов в емкости более 1 л не разрешается. Повторная стерилизация запрещена.
  • После стерилизации 1 флакон из серии отдается на полный химический анализ.
  • Категорически запрещается одновременное изготовление на 1 рабочем месте нескольких стерильных растворов, содержащих лекарственные вещества с различными наименованиями или одного наименования с различными концентрациями.
  • Готовые растворы оформляют к отпуску: этикетка с голубой сигнальной полосой, где указывается фамилия пациента, полный состав ЛФ, способ введения, № анализа, № серии, № лекарственной формы, кто приготовил, проверил, отпустил, дата, срок годности.

Схема технологического процесса.

I стадия Подготовительные работы

1.1 Подготовка помещения и оборудования.