ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 04.05.2024
Просмотров: 89
Скачиваний: 0
СОДЕРЖАНИЕ
Лабораторные методы исследования крови
Факторы влияющие на показатели крови
Влияние суточных биоритмов на показатели крови
Взятие и подготовка материала для исследования
Кровь для общего клинического анализа берут
Пробирки для получения плазмы крови с гепарином (биохимия, иммунохимия)
Пробирки для получения плазмы крови с цитратом натрия (коагулология)
Пробирки для получения плазмы крови для определения глюкозы
Пробирки для получения плазмы крови для определения СОЭ
Доставка, хранение и подготовка проб к исследованию
Клинический анализ крови включает определение
Факторы влияющие на правильность определения числа эритроцитов:
Источниками ошибок при подсчете эритроцитов в счетной камере являются:
Морфологические особенности эритроцитов при патологии
Клинико-диагностическое значение эритроцитопении
Талассемия (мешеневидные эритроциты, анизо-, пойкилоцитоз
Макроцитоз, пойкилоцитоз, анизоцитоз, гиперхромия
Гематокрит (показатель гематокрита)
Факторы, влияющие на правильность исследования лейкоцитов
Определение количества лейкоцитов в счетной камере.
Основные источники ошибок при подсчете лейкоцитов в камере:
Морфология базофилов, моноцитов, эозинофилов, лимфоцитов
Морфологическое исследование мазков крови
Техника приготовления мазка на предметном стекле
Дифференциальный подсчет лейкоцитов
Сдвиг лейкоцитарной формулы влево
Сдвиг лейкоцитарной формулы вправо
Причины повышения эозинофилов крови
Причины повышения базофилов крови
Современные технологии гематологического анализа
Подготовка и проведение исследований на гематологических анализаторах
Железодефицитная анемия встречается у:
Кетоновые тела – это ацетон, ацетоуксусная кислота и оксимасляная
Причины наличия гемоглобина в моче
Причины наличия лейкоцитов в моче
разные виды анемий (после кровопотери, железодефицитная, гемолитическая)
после хирургической операции рак различной локализации физическое переутомление эритремия
Тромбоцитопения
врожденные заболевания крови (гемофилии)
идиопатическая аутоиммунная тромбоцитопеническая пурпура лекарственная тромбоцитопения системная красная волчанка инфекции (вирусные и бактериальные инфекции, риккетсиоз, малярия, токсоплазмоз)
апластическая анемия пароксизмальная ночная гемоглобинурия аутоиммунная гемолитическая анемия и тромбоцитопения
ДВС-синдром (диссеминированного внутрисосудистого свертывания)
Переливание крови
У детей, рожденных недоношенными при гемолитической болезни новорожденных сердечная недостаточность тромбоз почечных вен
Современные технологии гематологического анализа
В настоящее время для подсчета и анализа клеток крови используют гематологические анализаторы разного уровня сложности.
Преимущество современных технологий подсчета и оценки форменных элементов крови:
высокая производительность (до 100-120 проб в час), небольшой объем крови для анализа (12-150 мкл)
анализ большого массива (десятки тысяч) клеток определение с высокой точностью и воспроизводимостью 20 и более параметров одновременно графическое представление результатов исследований (гистограммы, скетограммы).
Подготовка и проведение исследований на гематологических анализаторах
При выполнении анализа на гематологическом анализаторе предпочтительно использовать венозную кровь. Взятие венозной крови лучше осуществлять, применяя специальные одноразовые системы с ЭДТА - «МОНОВЕТ». Это гарантирует отсутствие в образце посторонних примесей, а наличие антикоагулянта в оптимальной концентрации предотвращает образование фибриновых сгустков и агрегацию тромбоцитов.
При взятии капиллярной крови оптимально использовать пробирки с ЭДТА - «МИКРОВЕТ». Нанесенный на внутреннюю поверхность пробирки мелкодисперсный порошок ЭДТА быстро растворяется в крови и надежно блокирует процессы свертывания крови и активации тромбоцитов.
Не следует использовать пробирки с выпаренным раствором ЭДТА. При испарении раствора на дне пробирки образуются крупные кристаллы ЭДТА, которые очень медленно растворяются в крови. Это может приводить к образованию фибриновых нитей в верхней части пробы крови.
Не сдавливать палец пациента при взятии капиллярной крови и не накладывать жгут, либо ослаблять его сразу же после прокола вены при взятии венозной крови.
Не забирать кровь со стекла.
Цельная кровь имеет высокую вязкость и поэтому трудно перемешивается. Перед началом измерения цельную кровь следует перемешивать плавным переворачиванием и вращением пробирки в течение не менее 2 минут. Для этих целей лучше всего использовать специальный гематологический шейкер.
При ручном перемешивании цельной крови недопустимы резкие встряхивающие движения, так как они приводят к механическому лизису эритроцитов.
Для дезинфекции подушечки пальца перед взятием крови и высушивания носика пробирки следует использовать специальные безворсовые салфетки. Помните, что применение ватных тампонов и других волокнистых материалов подобного рода приводит к засорению волокнами датчика подсчета клеток и гемоглобиновой камеры (для этого достаточно даже одного волокна!). В результате точность и воспроизводимость измерения концентрации гемоглобина резко падает. Извлечение посторонних частиц из камеры требует повышенного расхода промывающего раствора, а в ряде случаев, даже частичной разборки прибора.
При работе в режиме предилюции следует учитывать, что образование пузырьков при разведении крови с использованием дилютора может приводить к лизису клеток крови и, как следствие, являться причиной завышения результатов подсчета тромбоцитов.
Поэтому необходимо следить, чтобы жидкость стекала по стенке стаканчика без образования пузырьков.
Определяемые параметры: WBC – Лейкоциты RBC – Эритроциты Hgb – Гемоглобин, г/л Hct – Гематокрит, % MCV – Средний объем эритроцитов MCH – Среднее содержание гемоглобина в эритроците MCHC – Средняя концентрация гемоглобина в эритроците RDW – Показатель гетерогенности эритроцитов Plt – Тромбоциты MPV – Средний объем тромбоцитов PDW –Показатель гетерогенности тромбоцитов
Pct – Тромбокрит LY% – Лимфоциты, % LY# – Лимфоциты, мкл MO% – Моноциты, % MO# – Моноциты, мкл NE% – Нейтрофилы, % NE# – Нейтрофилы, мкл EO% – Иозонофилы, % EO# – Иозонофилы, мкл BA% – Базофилы, % BA# – Базофилы, мкл RE% – Ретикулоциты, % RE# – Ретикулоциты, мкл MRV* – Средний объем ретикулоцитов IRF* – Коэффициент зрелости ретикулоцитов HLR%* – Зрелые ретикулоциты, % HLR#* – Зрелые ретикулоциты, мкл MSCV* – Сферичность
Методы определения СОЭ
Микрометод Панченкова
Автоматизированный метод
Клинико-диагностическое значение определения СОЭ
Увеличение СОЭ наблюдается при различных воспалительных процессах, острых и хронических инфекциях, при инфаркте миокарда, опухолях, после кровопотери, оперативных вмешательств. СОЭ увеличивается при беременности, приеме многих стероидных гормонов (эстрогенов, глюкокортикоидов) и некоторых лекарственных препаратов (например, салицилаты). Увеличение СОЭ наблюдается при гиперхолестеринемии.
Особенно выраженное ускорение СОЭ (60-80 мм/ч) характерно для парапротеинемических гемобластозах (множественная миелома, макроглобулинемия Вальденстрема, острый плазмобластный лейкоз и др.) и симптоматических парапротеинемиях, сопутствующих злокачественным новообразованиям, хроническому гепатиту, циррозу печени, туберкулезу, амилоидозу, коллагенозам.
Ошибки при выполнении анализа на СОЭ могут быть связаны с различными факторами
При комнатной температуре СОЭ определяют не позже 2 часов после взятия крови. В случае хранения крови при +4°С, СОЭ определяют в течение не более 6 часов, но перед выполнением реакции кровь прогревают до комнатной температуры.
Исследование СОЭ должно выполняться при 18-25°С. При более высоких температурах значение СОЭ увеличивается, при низких – замедляется.
Перед проведением анализа кровь хорошо перемешивают, что обеспечит лучшую воспроизводимость результатов.
При отсутствии резкой границы между эритроцитным столбиком и плазмой (регенеративных анемиях), над компактной массой эритроцитов образуется светлая «вуаль» в несколько миллиметров, из разведенных эритроцитов (главным образом из ретикулоцитов). В таком случае определяется граница компактного слоя, а эритроцитарная вуаль причисляется к столбику плазмы.
Стеклянные капиллярные пипетки могут быть заменены на пластмассовые (полипропил, поликарбонат), однако они требуют проверки и оценки степени корреляции полученных результатов со стеклянными капиллярами.