Файл: Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков..pdf
ВУЗ: Не указан
Категория: Не указан
Дисциплина: Не указана
Добавлен: 14.10.2024
Просмотров: 154
Скачиваний: 0
144 |
ГЛАВА 3 |
Рис. 1. Газохроматографнческое разделение синтетической смеси N-ТФА- метиловых эфиров аминокислот и днпептидов.
П рибор |
марки |
«Perkin -Elm er |
F ra c to m e te r |
F |
|
20»: |
колонка: |
стеклянный |
капилляр |
|||||||||
50 м ■0,25 мм, подготовленный по Гробу [211 н |
покрытый днмегнлснлнконом OV-101 |
(95К) |
||||||||||||||||
и карбоваксом 20 М |
(59£); газ-носнтель |
азот, |
скорость потока |
I мл/мин; |
деление потока |
|||||||||||||
|
|
I : 30; |
тем п е р а т у р а п рограммируется |
как |
у казан о ; |
детектор: |
П11Д. |
|
|
|||||||||
1 — Ala, 2 — Val. 3 — Leo, 4 — lie, |
5 — Ser |
(ТМБРпронзводное. 6 — Thr |
(TMS), 7 — Phe, 8 — Ala- |
|||||||||||||||
A la |
(LL), |
9 — Val-Val |
(LL), |
1 0 — |
Val-Val |
(DL). |
11 — |
Ue-Val (LL). / 2 — He |
Val |
(DL), |
13 — |
Leu- |
||||||
Leu |
(LL). |
1 4 — Leu-Leu |
(DL), |
I S — |
Met-Ala |
(LL), |
16 — |
A la-Phe (LL). 1 7 — |
Ala |
Phe |
(DL), I S — |
Phe |
||||||
|
|
Pro |
(LL); 1 9 — P he -P ro (DL), 2 0 — Phe |
Phe |
(LL), 21 — Phe-Plie |
(DL). |
|
|
современных исследований в этой области и оказывается необ ходимой, если предстоит анализ смеси неизвестных пептидов, что представляет собой, например, частичный гидролизат белка. В то время как идентификация аминокислот и дипептидов в принципе возможна путем измерения относительного удержива ния, индексов удерживания или же введением стандартов, эта процедура кажется неосуществимой для исследования высших пептидов из-за громадного числа вероятных соединений. Напри мер, если взять только 10 аминокислот, то их комбинация может привести к 100 дипептидам и 1000 трипептидам.
Использование масс-спектрометрии для анализа пептидов впервые предложено Штенхагеном [2], а позднее наиболее полно Вейгандом, Проксом и сотр. [3—7] на примере метиловых эфи ров N-ТФА-пептидов после того, как соединения разделяли р
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ ПЕПТИДОВ |
145 |
40 |
30 |
20 |
10 |
О |
|
|
|
Время, |
мин |
|
|
Рис. 2. Газохроматографическое разделение |
N-ТФА-метиловых |
эфиров |
|||
|
|
близких дипептидов. |
|
||
Прибор марки |
«Perkln-EIm er |
F ra c to m e te r |
F 20»; |
колонка: стеклянны й |
капилляр |
50 м • 0.25 мм, подготовленный по Гробу |21] и покрытый полнпропнленглнколевой ж идкой
фазой; газносктель азот, скорость потока |
0,5 мл/мин, |
де л ен и е потока 1 ; 50; |
реж им |
|||
изотермический, 170 °С; детектор : |
П Н Д . |
(DL), 5— Ala-Val |
(LL), |
|||
1 — Ala-Ala (DL), 2— Ala Ala (LL), |
3 — Val-AIa |
(LL), |
4 — Val-Ala |
|||
6 — V al-V al (LL). |
7 — A la-V al |
(DL). |
S— V al-V al |
(DL). |
|
помощью ГЖХ и улавливали на выходе из колонки. Имеются также сообщения Ледерера [8] и Шемякина [9] о масс-спектро- метрин пептидов, но, так как масс-спектрометрическим аспектам посвящена гл. 4 этой книги, здесь, они больше обсуждаться не будут.
Газохроматографический анализ производных пептидов впер вые описан в 1960 г. в работе Вейганда, Кольба, Прокса и Томиды [10]. Эти авторы несколькими опытами продемонстриро вали главные задачи, все еще остающиеся актуальными, —
146 |
ГЛАВА 3 |
разделение диастереомеров, важное для изучения рацемизации, и анализ частичных гидролизатов с целью установления после довательности. О роли масс-спектрометрии в дальнейшей иден тификации улавливаемых соединений уже говорилось.
Впоследствии в ряде исследований метод ГЖХ получил бо лее широкое применение в этой области. Помимо ряда специ альных случаев они касались применения ГЖХ для выяснения аминокислотной последовательности в некоторых пептидах и исследования рацемизации в пептидном синтезе. Рассмотрим теперь эти вопросы более подробно.
3.2.ПОЛУЧЕНИЕ ЛЕТУЧИХ ПРОИЗВОДНЫХ
Так как свободные аминокислоты и пептиды недостаточно летучи, прежде чем начинать ГЖХ, их нужно превратить в летучие производные. Получение производных — это главная проблема, которая решена до сих пор еще не для всех пептидов. Часть трудностей возникает из-за того, что многие важные ами нокислоты в пептидной цепи наряду с а-амино- и карбоксиль ными группами содержат ряд других функциональных групп. В результате получаются производные, сильно различающиеся по летучести; кроме того, часто протекают осложняющие побоч ные реакции. Так как нет принципиальных отличий в методах получения летучих производных аминокислот и пептидов, можно ожидать, что результаты и опыт работы с производными амино кислот будут способствовать развитию аналогичных методов и для соответствующих пептидов. Пока недоступными для ГЖХ анализа являются пептиды, содержащие гистидин, аргинин или аминокислоты (подобно аспарагину и глутамину) с дополни тельной функциональной амидной группой. В отличие от амино кислот при анализе пептидов исследователь встречается с осо быми' эффектами, вызываемыми более высокими молекулярными весами пептидов и связанной с этим пониженной летучестью. Чтобы компенсировать низкую летучесть, приходится пользо ваться только такими защитными группами, которые очень устойчивы при высоких температурах, значительно увеличивают летучесть и легко доступны. Эти условия ограничивают приме нимость к пептидам большого числа защитных групп, исполь зуемых для аминокислот.
Биман и Веттер [11] разделили методом ГЖХ аминоспирты, образующиеся при восстановлении этиловых эфиров N-ацилпеп- тидов литийалюмогидридом. Для идентификации они исполь зовали масс-спектрометршо, однако сообщения о дальнейшем применении этого метода отсутствуют,
ГАЗОВАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ ПЕПТИДОВ |
147 |
3.2.1.Защита аминогруппы
По нескольким причинам для защиты аминогруппы в ГЖХ использовалась, за редким исключением, трифторацетильная группа. Трифторацетильные производные эфиров аминокислот и пептидов очень устойчивы при высоких температурах, а три фторацетильная группа придает большую летучесть, чем любая другая замещенная ацетильная группа [12]. Только гептафторбутирильные производные имеют более высокую летучесть [13], но они не нашли пока широкого применения, хотя в сочетании с масс-спектрометрией [77] и кажутся привлекательными из-за того, что соответствующие производные эфиров пептидов можно разделять при меньших температурах колонки и меньшей утечке колонки.
Так как для ГЖХ-анализа необходимо большое количество стандартных соединений, которые, как правило, нельзя купить и нужно синтезировать, то следующее важное преимущество трифторацетильной группы состоит в том, что это обычно ис пользуемая защитная группа в пептидной химии. Если трифтор ацетильная защитная группа применена для синтеза, то обра зующиеся метиловые эфиры можно непосредственно использо вать в качестве пептидов-стандартов для газохроматографиче ского анализа. Если в синтезе применяется хорошо известная карбобензоксигруппа, ее следует заменить на трифторацетильную действием трифторуксусиой кислоты [14], хотя даже мети ловые эфиры карбобензоксидипептидов пригодны для ГЖХ [15]. Интерес могли бы представлять и некоторые другие производ ные, но так как до настоящего времени в достаточной степени исследовали лишь N-ТФА-производные пептидов, они и буцут рассматриваться в этой главе. Трифторацетилирование проводят или метиловым эфиром трифторуксусиой кислоты с триэтиламином в слабощелочном растворе [10], или трифторуксусным ангид ридом [16]. В этих же условиях вместе с а-аминогруппой трифторацетилированию подвергается вторая аминогруппа в боко вой цепи лизина и орнитина.
3.2.2.Защита карбоксильной группы
До сих пор для пептидов использовались исключительно ме тиловые эфиры. Этерифицируют обычно или перед ацилирова нием, в абсолютном метаноле с сухим газообразным НС1, что приводит к образованию хлоргидратов метиловых эфиров соот ветствующих пептидов, или же после ацилирования — с помощью диазометана. Если соединение содержит дополнительные кар боксильные группы, как, например, глутаминовая или аспараги новая кислоты, то они хорошо метилируются в тех же условиях.
148 |
ГЛАВА 3 |
Хлоргидраты метиловых эфиров образуются непосредственно при частичном гидролизе пептида, если он проводится в метанольном растворе хлористого водорода.
3.2.3.Защитные группы для третьей функциональной группировки
Если исследуемый пептид содержит аминокислоты с третьей функциональной группой, то простых производных — метиловых эфиров N-ТФА-пептидов — оказывается недостаточно.
Метиловые эфиры N-ТФА-пептидов с гидроксилсодержащими аминокислотами (такими, как серин, треонин или оксипролин) лучше всего превращаются в триметилсмлильные (ТМС) произ водные при кипячении с гексаметилдисилазаном в течение при близительно 20 мин [17]. Без силилирования наблюдались мно гочисленные пики, обусловленные разложением. Метиловые эфиры N-ТФА-пептидов, содержащих тирозин, дают асимметрич ные пики [17], возможно, из-за сильных водородных связей фе нольной оксигруппы. Несмотря на то, что эта проблема может быть решена метилированием диазометаном, силилирование и в этом случае является предпочтительным. Серин- и треонинсо держащие пептиды нужно силилировать в любом случае, а ти розин в соответствующих пептидах силилируется в тех же усло виях.
Определенные трудности встречались при работе с цистеин содержащими пептидами, так как они разлагаются в условиях, обычных для ГЖХ-аиализа. По этой причине свободная меркаптогруппа должна быть защищена, чтобы избежать р-элиминиро- вания, а также окисления до дисульфидной связи. Байер и Кё ниг [18] применили с этой целью S-бензильпую группу и описали ГЖХ анализ эфиров некоторых N-ТФА-дипептидов и трипептндов. Исследуемый пептид бензилировали перед частичным гид ролизом, который проводили концентрированной соляной кисло той при 37°С в течение 72 ч. После упаривания в вакууме, эте рификации диазометаном и трифторацетилировання проводили анализ с помощью ГЖХ и масс-спектрометрии.
Вейганд и сотр. [17] предлагали проводить десульфирование путем нагревания пептидов с никелем Ренея в 90%-ном мета ноле, в результате чего из каждого остатка цистеина образуются производные аланина. Все другие серусодержащме аминокис лоты также претерпевают элиминирование серы; метионин, на пример, превращается в а-аминомасляную кислоту. Другим примером из работы Вейганда и сотр. [17] является определение последовательности глутатиона. Тетраэтиловый эфир дисуль фида ди-И-ТФА-глутатиона сначала десульфировали, а затем после частичного гидролиза, метилирования и трифторацетили-